БИОХИМИЯ, 2026, том 91, вып. 3, с. 511–536

УДК 577.12

Анализ чистоты и качества малых внеклеточных везикул плазмы крови методами протеомики и рамановской спектроскопии

© 2026 В.С. Чернышев 1,2*v_chernyshev@oparina4.ru, Н.Л. Стародубцева 1,3, Е.Н. Римская 1,4, А.Е. Бугрова 1,5, А.С. Кононихин 1,2, Д.Н. Силачев 1,6, А.О. Токарева 1, Е.А. Евтушенко 7, А.А. Яковлев 8, А.М. Юрин 1, М.А. Кепша 1, Е.А. Межевитинова 1, Е.Н. Николаев 2, В.Е. Франкевич 1, Н.М. Назарова 1, В.Н. Прилепская 1, Г.Т. Сухих 1,9

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России, 117997 Москва, Россия

Сколковский институт науки и технологий, 143026 Москва, Россия

Московский физико-технический институт (государственный университет), 141700 Московская область, Россия

Физический институт имени П.Н. Лебедева РАН, 119991 Москва, Россия

Институт биохимической физики имени Н.М. Эмануэля РАН, 119334 Москва, Россия

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, Научно-исследовательский институт физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, 119234 Москва, Россия

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, биологический факультет, 119234 Москва, Россия

Институт высшей нервной деятельности и нейрофизиологии Российской академии наук, 117485 Москва, Россия

ФГАОУ ВО Первый МГМУ имени И.М. Сеченова Минздрава России, кафедра акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии, 119991 Москва, Россия

Поступила в редакцию 18.11.2025
После доработки 13.02.2026
Принята к публикации 14.02.2026

DOI: 10.7868/S3034529426030047

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: малые внеклеточные везикулы, выделение, плазма крови, протеомика, масс-спектрометрия, рамановская спектроскопия.

Аннотация

Ультрацентрифугирование (UC) долгое время считалось «золотым стандартом» для выделения внеклеточных везикул (ВВ). Однако из‑за таких недостатков, как высокая стоимость ультрацентрифуги и роторов, трудоёмкий и длительный протокол, низкий выход с учётом исходного объёма биожидкости и низкая пропускная способность, продолжается разработка новых подходов к выделению ВВ. В настоящей работе мы сравнили три метода выделения наиболее изученного подтипа внеклеточных везикул, а именно малых внеклеточных везикул (мВВ), из плазмы крови человека: ультрацентрифугирование (UC), экспресс-асимметричную глубинную фильтрацию (ExADFi) и иммуноаффинный захват анти‑CD9 (AS‑CD9), с фокусом на их рамановские и протеомные профили. Для всех трёх методов чистоту и качество выделения мВВ оценивали по уровню контаминации фракции мВВ основными белками плазмы крови, такими как альбумин и аполипопротеины (APOA1, APOH, APOA4, APOC2, APOC1 и APOC4). Метод UC показал наибольшее соотношение концентрации белка к концентрации наночастиц. AS‑CD9 и ExADFi обеспечили чистоту и уровни невезикулярных загрязнений, сопоставимые с UC, при этом AS‑CD9 требовал минимальных затрат времени на выделение. Метод ExADFi продемонстрировал промежуточные результаты между UC и AS‑CD9 по таким характеристикам, как чистота образца мВВ, выход и время выделения. Рамановская спектроскопия дополнила подробности о составе выделенных мВВ и подтвердила различия, наблюдавшиеся в протеомных профилях. Полученные результаты показали, что AS‑CD9 и ExADFi могут служить альтернативой классического UC и могут применяться в зависимости от конечных требований и цели применения очищенных мВВ, включая функциональные исследования и задачи поиска биомаркеров.

Сноски

* Адресат для корреспонденции.

Дополнительные материалы

Приложение

Вклад авторов

Е.Н. Николаев, В.Е. Франкевич, М.А. Кепша, Е.А. Межевитинова, Н.М. Назарова, В.Н. Прилепская, Г.Т. Сухих – концепция и руководство работой; Е.Н. Римская, А.Е. Бугрова, В.С. Чернышев, А.С. Кононихин, А.О. Токарева, Е.А. Евтушенко, А.А. Яковлев, А.М. Юрин – проведение экспериментов; В.С. Чернышев, Н.Л. Стародубцева, Е.Н. Римская, Д.Н. Силачев – обсуждение результатов исследования; В.С. Чернышев, Н.Л. Стародубцева, Е.Н. Римская, А.Е. Бугрова, А.С. Кононихин, Д.Н. Силачев, А.О. Токарева, Е.А. Евтушенко, А.А. Яковлев, А.М. Юрин – написание текста; М.А. Кепша, Е.А. Межевитинова, Е.Н. Николаев, В.Е. Франкевич, Н.М. Назарова, В.Н. Прилепская, Г.Т. Сухих – редактирование текста статьи.

Финансирование

Работа выполнена при финансовой поддержке государственного задания Министерства здравоохранения Российской Федерации (регистрационный номер 12503063216‑9 «Разработка тест-системы для ранней и малоинвазивной диагностики предраковых и онкологических заболеваний аногенитальной области, ассоциированных с папилломавирусной инфекцией у женщин репродуктивного возраста методом жидкостной биопсии»).

Благодарности

Авторы выражают благодарность лаборатории масс-спектрометрии Сколковского института науки и технологий за помощь в проведении протеомного ВЭЖХ-МС-анализа.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Соблюдение этических норм

Исследование было одобрено комиссией по этике биомедицинских исследований ФГБУ «НМИЦ АГП им. В.И. Кулакова» Минздрава России (протокол № 1 от 30 января 2025 г.).

Список литературы

1. Jeppesen, D. K., Zhang, Q., Franklin, J. L., and Coffey, R. J. (2023) Extracellular vesicles and nanoparticles: emerging complexities, Trends Cell Biol., 33, 667-681, https://doi.org/10.1016/j.tcb.2023.01.002.

2. Todorova, D., Simoncini, S., Lacroix, R., Sabatier, F., and Dignat-George, F. (2017) Extracellular vesicles in angiogenesis, Circ. Res., 120, 1658-1673, https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.117.309681.

3. Chaput, N., and Théry, C. (2011) Exosomes: immune properties and potential clinical implementations, Semin. Immunopathol., 33, 419-440, https://doi.org/10.1007/s00281-010-0233-9.

4. Kalluri, R., and McAndrews, K. M. (2023) The role of extracellular vesicles in cancer, Cell, 186, 1610-1626, https://doi.org/10.1016/j.cell.2023.03.010.

5. Azmi, A. S., Bao, B., and Sarkar, F. H. (2013) Exosomes in cancer development, metastasis, and drug resistance: a comprehensive review, Cancer Metastasis Rev., 32, 623-642, https://doi.org/10.1007/s10555-013-9441-9.

6. Welsh, J. A., Goberdhan, D. C. I., O’Driscoll, L., Buzas, E. I., Blenkiron, C., Bussolati, B., Cai, H., di Vizio, D., Driedonks, T. A. P., Erdbrügger, U., Falcon-Perez, J. M., Fu, Q., Hill, A. F., Lenassi, M., Lim, S. K., Mahoney, M. G., Mohanty, S., Möller, A., Nieuwland, R., et al. (2024) Minimal information for studies of extracellular vesicles (MISEV2023): from basic to advanced approaches, J. Extracell. Vesicle, 13, e12404, https://doi.org/10.1002/jev2.12404.

7. Guo, X., Sui, R., and Piao, H. (2022) Tumor-derived small extracellular vesicles: potential roles and mechanism in glioma, J. Nanobiotechnol., 20, 383, https://doi.org/10.1186/s12951-022-01584-6.

8. Chernyshev, V. S., Nozdriukhin, D., Chuprov-Netochin, R., Tsydenzhapova, E., Novoselova, M., Gorin, D., and Yashchenok, A. (2022) Engineered multicompartment vesicosomes for selective uptake by living cells, Colloids Surf. B Biointerf., 220, 112953, https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2022.112953.

9. Fu, S., Zhang, Y., Li, Y., Luo, L., Zhao, Y., and Yao, Y. (2020) Extracellular vesicles in cardiovascular diseases, Cell Death Discov., 6, 68, https://doi.org/10.1038/s41420-020-00305-y.

10. Kalluri, R. (2016) The biology and function of exosomes in cancer, J. Clin. Invest., 126, 1208-1215, https://doi.org/10.1172/JCI81135.

11. Lee, M.-J., Park, D.-H., and Kang, J.-H. (2016) Exosomes as the source of biomarkers of metabolic diseases, Ann. Pediatr. Endocrinol. Metab., 21, 119, https://doi.org/10.6065/apem.2016.21.3.119.

12. Pegtel, D. M., Peferoen, L., and Amor, S. (2014) Extracellular vesicles as modulators of cell-to-cell communication in the healthy and diseased brain, Phil. Trans. R. Soc. B, 369, 20130516, https://doi.org/10.1098/rstb.2013.0516.

13. Caruso Bavisotto, C., Scalia, F., Marino Gammazza, A., Carlisi, D., Bucchieri, F., Conway de Macario, E., Macario, A. J. L., Cappello, F., and Campanella, C. (2019) Extracellular vesicle-mediated cell-cell communication in the nervous system: focus on neurological diseases, IJMS, 20, 434, https://doi.org/10.3390/ijms20020434.

14. Anel, A., Gallego-Lleyda, A., De Miguel, D., Naval, J., and Martínez-Lostao, L. (2019) Role of exosomes in the regulation of T-cell mediated immune responses and in autoimmune disease, Cells, 8, 154, https://doi.org/10.3390/cells8020154.

15. Tan, L., Wu, H., Liu, Y., Zhao, M., Li, D., and Lu, Q. (2016) Recent advances of exosomes in immune modulation and autoimmune diseases, Autoimmunity, 49, 357-365, https://doi.org/10.1080/08916934.2016.1191477.

16. Wang, K., Zhang, S., Weber, J., Baxter, D., and Galas, D. J. (2010) Export of microRNAs and microRNA-protective protein by mammalian cells, Nucleic Acids Res., 38, 7248-7259, https://doi.org/10.1093/nar/gkq601.

17. Ge, R., Tan, E., Sharghi-Namini, S., and Asada, H. H. (2012) Exosomes in cancer microenvironment and beyond: have we overlooked these extracellular messengers? Cancer Microenviron., 5, 323-332, https://doi.org/10.1007/s12307-012-0110-2.

18. Pucci, F., and Pittet, M. J. (2013) Molecular pathways: tumor-derived microvesicles and their interactions with immune cells in vivo, Clin. Cancer Res., 19, 2598-2604, https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-12-0962.

19. Regev-Rudzki, N., Wilson, D. W., Carvalho, T. G., Sisquella, X., Coleman, B. M., Rug, M., Bursac, D., Angrisano, F., Gee, M., Hill, A. F., Baum, J., and Cowman, A. F. (2013) Cell-cell communication between malaria-infected red blood cells via exosome-like vesicles, Cell, 153, 1120-1133, https://doi.org/10.1016/j.cell.2013.04.029.

20. Feng, Q., Zhang, C., Lum, D., Druso, J. E., Blank, B., Wilson, K. F., Welm, A., Antonyak, M. A., and Cerione, R. A. (2017) A class of extracellular vesicles from breast cancer cells activates VEGF receptors and tumour angiogenesis, Nat. Commun., 8, 14450, https://doi.org/10.1038/ncomms14450.

21. Buzas, E. I. (2023) The roles of extracellular vesicles in the immune system, Nat. Rev. Immunol., 23, 236-250, https://doi.org/10.1038/s41577-022-00763-8.

22. Witwer, K. W., Buzás, E. I., Bemis, L. T., Bora, A., Lässer, C., Lötvall, J., Nolte-‘t Hoen, E. N., Piper, M. G., Sivaraman, S., Skog, J., Théry, C., Wauben, M. H., and Hochberg, F. (2013) Standardization of sample collection, isolation and analysis methods in extracellular vesicle research, J. Extracell. Vesicle, 2, 20360, https://doi.org/10.3402/jev.v2i0.20360.

23. Taylor, D. D., and Shah, S. (2015) Methods of isolating extracellular vesicles impact down-stream analyses of their cargoes, Methods, 87, 3-10, https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2015.02.019.

24. Brennan, K., Martin, K., FitzGerald, S. P., O’Sullivan, J., Wu, Y., Blanco, A., Richardson, C., and Mc Gee, M. M. (2020) A comparison of methods for the isolation and separation of extracellular vesicles from protein and lipid particles in human serum, Sci. Rep., 10, 1039, https://doi.org/10.1038/s41598-020-57497-7.

25. Chernyshev, V. S., Chuprov-Netochin, R. N., Tsydenzhapova, E., Svirshchevskaya, E. V., Poltavtseva, R. A., Merdalimova, A., Yashchenok, A., Keshelava, A., Sorokin, K., Keshelava, V., Sukhikh, G. T., Gorin, D., Leonov, S., and Skliar, M. (2022) Asymmetric depth‐filtration: A versatile and scalable method for high-yield isolation of extracellular vesicles with low contamination, J. Extracell. Vesicle, 11, e12256, https://doi.org/10.1002/jev2.12256.

26. Baranyai, T., Herczeg, K., Onódi, Z., Voszka, I., Módos, K., Marton, N., Nagy, G., Mäger, I., Wood, M. J., el Andaloussi, S., Pálinkás, Z., Kumar, V., Nagy, P., Kittel, Á., Buzás, E. I., Ferdinandy, P., and Giricz, Z. (2015) Isolation of exosomes from blood plasma: qualitative and quantitative comparison of ultracentrifugation and size exclusion chromatography methods, PLoS One, 10, e0145686, https://doi.org/10.1371/journal.pone.0145686.

27. Tauro, B. J., Greening, D. W., Mathias, R. A., Ji, H., Mathivanan, S., Scott, A. M., and Simpson, R. J. (2012) Comparison of ultracentrifugation, density gradient separation, and immunoaffinity capture methods for isolating human colon cancer cell line LIM1863-derived exosomes, Methods, 56, 293-304, https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2012.01.002.

28. Krivitsky, V., Krivitsky, A., Mantella, V., Ben-Yehuda Greenwald, M., Sankar, D. S., Betschmann, J., Bader, J., Zoratto, N., Schreier, K., Feiss, S., Walker, D., Dengjel, J., Werner, S., and Leroux, J. (2023) Ultrafast and controlled capturing, loading, and release of extracellular vesicles by a portable microstructured electrochemical fluidic device, Adv. Mater., 35, 2212000, https://doi.org/10.1002/adma.202212000.

29. Zhdanova, D. Y., Bobkova, N. V., Chaplygina, A. V., Svirshchevskaya, E. V., Poltavtseva, R. A., Vodennikova, A. A., Chernyshev, V. S., and Sukhikh, G. T. (2025) Effect of small extracellular vesicles produced by mesenchymal stem cells on 5xFAD mice hippocampal cultures, IJMS, 26, 4026, https://doi.org/10.3390/ijms26094026.

30. Rekker, K., Saare, M., Roost, A. M., Kubo, A.-L., Zarovni, N., Chiesi, A., Salumets, A., and Peters, M. (2014) Comparison of serum exosome isolation methods for microRNA profiling, Clin. Biochem., 47, 135-138, https://doi.org/10.1016/j.clinbiochem.2013.10.020.

31. Nordin, J. Z., Lee, Y., Vader, P., Mäger, I., Johansson, H. J., Heusermann, W., Wiklander, O. P. B., Hällbrink, M., Seow, Y., Bultema, J. J., Gilthorpe, J., Davies, T., Fairchild, P. J., Gabrielsson, S., Meisner-Kober, N. C., Lehtiö, J., Smith, C. I. E., Wood, M. J. A., and Andaloussi, S. (2015) Ultrafiltration with size-exclusion liquid chromatography for high yield isolation of extracellular vesicles preserving intact biophysical and functional properties, Nanomed. Nanotechnol. Biol. Med., 11, 879-883, https://doi.org/10.1016/j.nano.2015.01.003.

32. Yamada, T., Inoshima, Y., Matsuda, T., and Ishiguro, N. (2012) Comparison of methods for isolating exosomes from bovine milk, J. Vet. Med. Sci., 74, 1523-1525, https://doi.org/10.1292/jvms.12-0032.

33. Gavrilov, M., Makarova, N., Sysoeva, A., Evtushenko, E., Bragina, E., Vishnyakova, P., Karyagina, V., Bagdasaryan, A., Yakimova, A., Silachev, D., Kalinina, E., and Sukhikh, G. (2025) Changes in cryotolerance of spermatozoa in men with teratozoospermia under the influence of extracellular vesicles from donor seminal plasma isolated by depth filtration, Life, 15, 1436, https://doi.org/10.3390/life15091436.

34. Moiseeva, E. O., Kozhevnikova, D. D., Yashchenok, A. M., Sergeev, I. S., Alentov, I. I., Gorin, D. A., and Chernyshev, V. S. (2025) Surface modification of cellulose acetate membrane for fabrication of microfluidic platforms for express extracellular vesicle-based liquid biopsy, Microchem. J., 208, 112388, https://doi.org/10.1016/j.microc.2024.112388.

35. Rimskaya, E., Gorevoy, A., Shelygina, S., Perevedentseva, E., Timurzieva, A., Saraeva, I., Melnik, N., Kudryashov, S., and Kuchmizhak, A. (2024) Multi-wavelength Raman differentiation of malignant skin neoplasms, IJMS, 25, 7422, https://doi.org/10.3390/ijms25137422.

36. Liu, Y.-J., Kyne, M., Kang, C., and Wang, C. (2025) Raman spectroscopy in extracellular vesicles analysis: techniques, applications and advancements, Biosens. Bioelectron., 270, 116970, https://doi.org/10.1016/j.bios.2024.116970.

37. Rimskaya, E., Gorevoy, A., Yakimova, A., Makarova, N., Starodubtseva, N., Kudryashov, S., Nazarenko, R., Kalinina, E., Frankevich, V., and Sukhikh, G. (2025) Enhancing male fertility diagnostics with seminal plasma Raman spectroscopy, Spectrochim. Acta A. Mol. Biomol. Spectrosc., 340, 126237, https://doi.org/10.1016/j.saa.2025.126237.

38. Safar, W., Azziz, A., Edely, M., and Lamy De La Chapelle, M. (2023) Conventional Raman, SERS and TERS studies of DNA compounds, Chemosensors, 11, 399, https://doi.org/10.3390/chemosensors11070399.

39. Chao, J., Cao, W., Su, S., Weng, L., Song, S., Fan, C., and Wang, L. (2016) Nanostructure-based surface-enhanced Raman scattering biosensors for nucleic acids and proteins, J. Mater. Chem. B, 4, 1757-1769, https://doi.org/10.1039/C5TB02135A.

40. Merdalimova, A., Chernyshev, V., Nozdriukhin, D., Rudakovskaya, P., Gorin, D., and Yashchenok, A. (2019) Identification and analysis of exosomes by surface-enhanced Raman spectroscopy, Appl. Sci., 9, 1135, https://doi.org/10.3390/app9061135.

41. Imanbekova, M., Suarasan, S., Rojalin, T., Mizenko, R. R., Hilt, S., Mathur, M., Lepine, P., Nicouleau, M., Mohamed, N.-V., Durcan, T. M., Carney, R. P., Voss, J. C., and Wachsmann-Hogiu, S. (2021) Identification of amyloid beta in small extracellular vesicles via Raman spectroscopy, Nanoscale Adv., 3, 4119-4132, https://doi.org/10.1039/D1NA00330E.

42. Smith, Z. J., Lee, C., Rojalin, T., Carney, R. P., Hazari, S., Knudson, A., Lam, K., Saari, H., Ibañez, E. L., Viitala, T., Laaksonen, T., Yliperttula, M., and Wachsmann‐Hogiu, S. (2015) Single exosome study reveals subpopulations distributed among cell lines with variability related to membrane content, J. Extracell. Vesicle, 4, 28533, https://doi.org/10.3402/jev.v4.28533.

43. Fernández-Sáez, E. M., Bravo, S. B., Pena, C., and García, Á. (2025) The proteome of circulating extracellular vesicles and their functional effect on platelets vary with the isolation method, Sci. Rep., 15, 20490, https://doi.org/10.1038/s41598-025-05374-6.

44. Singh, M., Tiwari, P. K., Kashyap, V., and Kumar, S. (2025) Proteomics of extracellular vesicles: recent updates, challenges and limitations, Proteomes, 13, 12, https://doi.org/10.3390/proteomes13010012.

45. Suresh, P. S., and Zhang, Q. (2025) Comprehensive comparison of methods for isolation of extracellular vesicles from human plasma, J. Proteome Res., 24, 2956-2967, https://doi.org/10.1021/acs.jproteome.5c00149.

46. Silachev, D., Goryunov, K., Shpilyuk, M., Beznoschenko, O., Morozova, N., Kraevaya, E., Popkov, V., Pevzner, I., Zorova, L., Evtushenko, E., Starodubtseva, N., Kononikhin, A., Bugrova, A., Evtushenko, E., Plotnikov, E., Zorov, D., and Sukhikh, G. (2019) Effect of MSCs and MSC-derived extracellular vesicles on human blood coagulation, Cells, 8, 258, https://doi.org/10.3390/cells8030258.

47. Ding, X., Huang, X., Jiang, J., Han, S., Zhou, Y., Bai, Z., and Gong, F. (2025) Identification of colorectal cancer-associated protein signatures in small extracellular vesicles based on proteomics, J. Proteome Res., 24, 5127-5138, https://doi.org/10.1021/acs.jproteome.5c00509.

48. Rontogianni, S., Synadaki, E., Li, B., Liefaard, M. C., Lips, E. H., Wesseling, J., Wu, W., and Altelaar, M. (2019) Proteomic profiling of extracellular vesicles allows for human breast cancer subtyping, Commun. Biol., 2, 325, https://doi.org/10.1038/s42003-019-0570-8.

49. Mallia, A., Gianazza, E., Zoanni, B., Brioschi, M., Barbieri, S. S., and Banfi, C. (2020) Proteomics of extracellular vesicles: update on their composition, biological roles and potential use as diagnostic tools in atherosclerotic cardiovascular diseases, Diagnostics, 10, 843, https://doi.org/10.3390/diagnostics10100843.

50. Hüttmann, N., Li, Y., Poolsup, S., Zaripov, E., D’Mello, R., Susevski, V., Minic, Z., and Berezovski, M. V. (2024) Surface proteome of extracellular vesicles and correlation analysis reveal breast cancer biomarkers, Cancers, 16, 520, https://doi.org/10.3390/cancers16030520.

51. Zhao, J., Lui, H., McLean, D. I., and Zeng, H. (2007) Automated autofluorescence background subtraction algorithm for biomedical Raman spectroscopy, Appl. Spectrosc., 61, 1225-1232, https://doi.org/10.1366/000370207782597003.

52. Zhao, J., Lui, H., I., D., and Zeng, H. (2010) Real-time Raman spectroscopy for noninvasive in vivo skin analysis and diagnosis. In new developments in biomedical engineering, InTech, https://doi.org/10.5772/7603.

53. Leon-Bejarano, M., Dorantes-Mendez, G., Ramirez-Elias, M., Mendez, Martin. O., Alba, A., Rodriguez-Leyva, Ildefonso., and Jimenez, M. (2016) Fluorescence background removal method for biological Raman spectroscopy based on empirical mode decomposition, 2016 38th Annual International Conference of the IEEE Engineering in Medicine and Biology Society (EMBC), pp. 3610-3613, IEEE, Orlando, FL, https://doi.org/10.1109/EMBC.2016.7591509.

54. León-Bejarano, F., Méndez, M. O., Ramírez-Elías, M. G., and Alba, A. (2019) improved Vancouver Raman algorithm based on empirical mode decomposition for denoising biological samples, Appl. Spectrosc., 73, 1436-1450, https://doi.org/10.1177/0003702819860121.

55. Saraeva, I. N., Rimskaya, E. N., Timurzieva, A. B., Gorevoy, A. V., Sheligyna, S. N., Popadyuk, V. I., Perevedentseva, E. V., and Kudryashov, S. I. (2024) Analysis of skin neoplasms’ Raman spectra using the lorentz approximation method: pilot studies, JETP Lett., 119, 556-563, https://doi.org/10.1134/S0021364023604153.

56. Sella, S., Adami, V., Amati, E., Bernardi, M., Chieregato, K., Gatto, P., Menarin, M., Pozzato, A., Pozzato, G., and Astori, G. (2018) In vitro analysis of Quantum Molecular Resonance effects on human mesenchymal stromal cells, PLoS One, 13, e0190082, https://doi.org/10.1371/journal.pone.0190082.

57. Vallejo, M. C., Sarkar, S., Elliott, E. C., Henry, H. R., Powell, S. M., Diaz Ludovico, I., You, Y., Huang, F., Payne, S. H., Ramanadham, S., Sims, E. K., Metz, T. O., Mirmira, R. G., and Nakayasu, E. S. (2023) A proteomic meta-analysis refinement of plasma extracellular vesicles, Sci. Data, 10, 837, https://doi.org/10.1038/s41597-023-02748-1.

58. Keerthikumar, S., Chisanga, D., Ariyaratne, D., al Saffar, H., Anand, S., Zhao, K., Samuel, M., Pathan, M., Jois, M., Chilamkurti, N., Gangoda, L., and Mathivanan, S. (2016) ExoCarta: a web-based compendium of exosomal cargo, J. Mol. Biol., 428, 688-692, https://doi.org/10.1016/j.jmb.2015.09.019.

59. Szklarczyk, D., Kirsch, R., Koutrouli, M., Nastou, K., Mehryary, F., Hachilif, R., Gable, A. L., Fang, T., Doncheva, N. T., Pyysalo, S., Bork, P., Jensen, L. J., and von Mering, C. (2023) The STRING database in 2023: protein-protein association networks and functional enrichment analyses for any sequenced genome of interest, Nucleic Acids Res., 51, D638-D646, https://doi.org/10.1093/nar/gkac1000.

60. Ayala-Mar, S., Donoso-Quezada, J., Gallo-Villanueva, R. C., Perez-Gonzalez, V. H., and González-Valdez, J. (2019) Recent advances and challenges in the recovery and purification of cellular exosomes, Electrophoresis, 40, 3036-3049, https://doi.org/10.1002/elps.201800526.

61. Patel, G. K., Khan, M. A., Zubair, H., Srivastava, S. K., Khushman, M., Singh, S., and Singh, A. P. (2019) Comparative analysis of exosome isolation methods using culture supernatant for optimum yield, purity and downstream applications, Sci. Rep., 9, 5335, https://doi.org/10.1038/s41598-019-41800-2.

62. Bobrie, A., Colombo, M., Krumeich, S., Raposo, G., and Théry, C. (2012) Diverse subpopulations of vesicles secreted by different intracellular mechanisms are present in exosome preparations obtained by differential ultracentrifugation, J. Extracell. Vesicle, 1, 18397, https://doi.org/10.3402/jev.v1i0.18397.

63. Mathieu, M., Névo, N., Jouve, M., Valenzuela, J. I., Maurin, M., Verweij, F. J., Palmulli, R., Lankar, D., Dingli, F., Loew, D., Rubinstein, E., Boncompain, G., Perez, F., and Théry, C. (2021) Specificities of exosome versus small ectosome secretion revealed by live intracellular tracking of CD63 and CD9, Nat. Commun., 12, 4389, https://doi.org/10.1038/s41467-021-24384-2.

64. Yu, L., Shi, H., Gao, T., Xu, W., Qian, H., Jiang, J., Yang, X., and Zhang, X. (2025) Exomeres and supermeres: current advances and perspectives, Bioactive Mater., 50, 322-343, https://doi.org/10.1016/j.bioactmat.2025.04.012.

65. Anand, S., Samuel, M., and Mathivanan, S. (2021) Exomeres: a new member of extracellular vesicles family. In new frontiers: extracellular vesicles family, Subcell Biochem., 97, 89-97, https://doi.org/10.1007/978-3-030-67171-6_5.

66. Skliar, M., Chernyshev, V. S., Belnap, D. M., Sergey, G. V., Al-Hakami, S. M., Bernard, P. S., Stijleman, I. J., and Rachamadugu, R. (2018) Membrane proteins significantly restrict exosome mobility, Biochem. Biophys. Res. Commun., 501, 1055-1059, https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2018.05.107.

67. Chernyshev, V. S., Rachamadugu, R., Tseng, Y. H., Belnap, D. M., Jia, Y., Branch, K. J., Butterfield, A. E., Pease, L. F., Bernard, P. S., and Skliar, M. (2015) Size and shape characterization of hydrated and desiccated exosomes, Anal. Bioanal. Chem., 407, 3285-3301, https://doi.org/10.1007/s00216-015-8535-3.

68. Zhang, X., Borg, E. G. F., Liaci, A. M., Vos, H. R., and Stoorvogel, W. (2020) A novel three step protocol to isolate extracellular vesicles from plasma or cell culture medium with both high yield and purity, J. Extracell. Vesicle, 9, 1791450, https://doi.org/10.1080/20013078.2020.1791450.

69. Premasiri, W. R., Lee, J. C., and Ziegler, L. D. (2012) Surface-enhanced Raman scattering of whole human blood, blood plasma, and red blood cells: cellular processes and bioanalytical sensing, J. Phys. Chem. B, 116, 9376-9386, https://doi.org/10.1021/jp304932g.

70. Tatischeff, I., Larquet, E., Falcón-Pérez, J. M., Turpin, P., and Kruglik, S. G. (2012) Fast characterisation of cell‐derived extracellular vesicles by nanoparticles tracking analysis, cryo‐electron microscopy, and Raman tweezers microspectroscopy, J. Extracell. Vesicle, 1, 19179, https://doi.org/10.3402/jev.v1i0.19179.

71. Lavialle, F., Deshayes, S., Gonnet, F., Larquet, E., Kruglik, S. G., Boisset, N., Daniel, R., Alfsen, A., and Tatischeff, I. (2009) Nanovesicles released by Dictyostelium cells: a potential carrier for drug delivery, Int. J. Pharmaceut., 380, 206-215, https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2009.06.039.

72. Kerr, L. T., Gubbins, L., Weiner Gorzel, K., Sharma, S., Kell, M., McCann, A., and Hennelly, B. M. (2014) Raman spectroscopy and SERS analysis of ovarian tumour derived exosomes (TEXs): a preliminary study, Proc. SPIE 9129, Biophotonics: Photonic Solutions for Better Health Care IV, 91292Q, Brussels, Belgium, https://doi.org/10.1117/12.2051759.

73. Munro, P. R. T. (2014) Handbook of Biophotonics: 3 Volume Set, edited by Jürgen Popp, Valery V. Tuchin, Arthur Chiou and Stefan H. Heinemann: Scope: handbook, reference. Level: specialist, scientist, engineers, Contemporary Physics, 55, 259-259, https://doi.org/10.1080/00107514.2014.915237.

74. Movasaghi, Z., Rehman, S., and Rehman, I. U. (2007) Raman spectroscopy of biological tissues, Appl. Spectroscopy Rev., 42, 493-541, https://doi.org/10.1080/05704920701551530.

75. Aono, S., Kato, T., Matsuki, M., Nakajima, H., Ohta, T., Uchida, T., and Kitagawa, T. (2002) Resonance Raman and ligand binding studies of the oxygen-sensing signal transducer protein HemAT from Bacillus subtilis, J. Biol. Chem., 277, 13528-13538, https://doi.org/10.1074/jbc.M112256200.

76. Czamara, K., Majzner, K., Pacia, M. Z., Kochan, K., Kaczor, A., and Baranska, M. (2015) Raman spectroscopy of lipids: a review, J. Raman Spectrosc., 46, 4-20, https://doi.org/10.1002/jrs.4607.

77. Ghosh, N., Roy, S., Bandyopadhyay, A., and Mondal, J. A. (2022) Vibrational Raman spectroscopy of the hydration shell of ions, Liquids, 3, 19-39, https://doi.org/10.3390/liquids3010003.

78. Saari, H., Marttila, H., Poranen, M. M., Oksanen, H. M., Zini, J., and Laitinen, S. (2024) Inline Raman spectroscopy provides versatile molecular monitoring for platelet extracellular vesicle purification with anion-exchange chromatography, IJMS, 25, 8130, https://doi.org/10.3390/ijms25158130.

79. Desmarchelier, C., and Borel, P. (2017) Overview of carotenoid bioavailability determinants: from dietary factors to host genetic variations, Trends Food Sci. Technol., 69, 270-280, https://doi.org/10.1016/j.tifs.2017.03.002.

80. Nikitidou, E., Khoonsari, P. E., Shevchenko, G., Ingelsson, M., Kultima, K., and Erlandsson, A. (2017) Increased release of apolipoprotein E in extracellular vesicles following amyloid-β protofibril exposure of neuroglial co-cultures, JAD, 60, 305-321, https://doi.org/10.3233/JAD-170278.

81. Jiang, S., Li, X., Li, Y., Chang, Z., Yuan, M., Zhang, Y., Zhu, H., Xiu, Y., Cong, H., Yin, L., Yu, Z.-W., Fan, J., He, W., Shi, K., Tian, D.-C., Zhang, J., Verkhratsky, A., Jin, W.-N., and Shi, F.-D. (2024) APOE from patient-derived astrocytic extracellular vesicles alleviates neuromyelitis optica spectrum disorder in a mouse model, Sci. Transl. Med., 16, eadg5116, https://doi.org/10.1126/scitranslmed.adg5116.

82. Chen, F., Chen, Y., Feng, S., Chen, H., Deng, L., Ma, F., Ke, Q., Liang, Q., Chen, J., Peng, X., Lu, J., Liu, Y., Xie, Y., Cao, H., Sun, Y., Wu, W., Cui, L., and Wang, Y. (2025) APOE4 triggers dysregulated synaptic vesicle release by disrupting SNARE complex assembly, Cell. Mol. Life Sci., 82, 248, https://doi.org/10.1007/s00018-025-05787-6.

83. Tóth, E. Á., Turiák, L., Visnovitz, T., Cserép, C., Mázló, A., Sódar, B. W., Försönits, A. I., Petővári, G., Sebestyén, A., Komlósi, Z., Drahos, L., Kittel, Á., Nagy, G., Bácsi, A., Dénes, Á., Gho, Y. S., Szabó-Taylor, K. É., and Buzás, E. I. (2021) Formation of a protein corona on the surface of extracellular vesicles in blood plasma, J. Extracell. Vesicle, 10, e12140, https://doi.org/10.1002/jev2.12140.

84. Coumans, F. A. W., Brisson, A. R., Buzas, E. I., Dignat-George, F., Drees, E. E. E., El-Andaloussi, S., Emanueli, C., Gasecka, A., Hendrix, A., Hill, A. F., Lacroix, R., Lee, Y., van Leeuwen, T. G., Mackman, N., Mäger, I., Nolan, J. P., van der Pol, E., Pegtel, D. M., Sahoo, S., et al. (2017) Methodological guidelines to study extracellular vesicles, Circ. Res., 120, 1632-1648, https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.117.309417.

85. Zini, J., Saari, H., Ciana, P., Viitala, T., Lõhmus, A., Saarinen, J., and Yliperttula, M. (2022) Infrared and Raman spectroscopy for purity assessment of extracellular vesicles, Eur. J. Pharmaceut. Sci., 172, 106135, https://doi.org/10.1016/j.ejps.2022.106135.

86. Gualerzi, A., Kooijmans, S. A. A., Niada, S., Picciolini, S., Brini, A. T., Camussi, G., and Bedoni, M. (2019) Raman spectroscopy as a quick tool to assess purity of extracellular vesicle preparations and predict their functionality, J. Extracell. Vesicle, 8, 1568780, https://doi.org/10.1080/20013078.2019.1568780.