БИОХИМИЯ, 2022, том 87, вып. 3, с. 307–320
УДК 577.112
Гибридные белки с короткими конформационными эпитопами рецептор-связывающего домена Spike‑белка вируса SARS‑CoV‑2 способствуют выработке вируснейтрализующих антител при иммунизации
1 Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, 123098 Москва, Россия
2 Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной биотехнологии, 127550 Москва, Россия
3 НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, 119991 Москва, Россия
4 НИИ гриппа имени А.А. Смородинцева Минздрава России, 197376 Санкт-Петербург, Россия
5 Санкт-Петербургский институт вакцин и сывороток ФМБА России, 198320 Санкт-Петербург, Россия
Поступила в редакцию 31.01.2022
После доработки 16.02.2022
Принята к публикации 16.02.2022
DOI: 10.31857/S0320972522030010
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: SARS-CoV-2, Spike-белок, RBD, RBM, эпитопная вакцина, эпитоп, альдолаза.
Статья на английском языке опубликована в режиме Open Access (открытого доступа) на сайте издательства Springer. DOI: 10.1134/S0006297922040022.
Аннотация
На основе предложенного ранее подхода синтезом в клетках Escherichia coli получены гибридные рекомбинантные белки – потенциальные компоненты эпитопных вакцин, содержащие короткие конформационные эпитопы рецептор-связывающего домена Spike-белка вируса SARS‑CoV‑2 (144–153, 337–346, 414–425, 496–507 а.о.), реализующие большое количество белок-белковых взаимодействий в комплексах с нейтрализующими антителами и ACE2 (ангиотензин-превращающий фермент 2). Полученными белками трёхкратно с интервалом в 2 недели иммунизировали мышей и исследовали иммуногенность белковых антигенов и способность сывороток взаимодействовать с инактивированным вирусом SARS‑CoV‑2 и с рецептор-связывающим доменом (RBD) Spike-белка, полученным в эукариотическом продуценте. Все рекомбинантные белки демонстрировали высокую иммуногенность. Наиболее высокий титр при связывании с RBD Spike-белка продемонстрировала сыворотка, полученная при иммунизации белком на основе эпитопа 414–425. При этом титры сывороток при связывании с инактивированным вирусом и RBD в случае остальных белков оказались существенно ниже титров для полученных ранее четырёх белков на основе петлеобразных эпитопов 452–494 и 470–491, конформация которых дополнительно фиксировалась дисульфидной связью. Для всех белков – полученных ранее и в данной работе – проведено исследование активации клеточного иммунитета, детектируемой по уровню синтеза цитокинов спленоцитами иммунизированных мышей. Максимально выраженный уровень повышения синтеза цитокинов наблюдался в случае ответа на белки, включающие эпитопы с дисульфидными связями (452–494, 470–491), а также эпитопы 414–425 и 496–507. После оптимизации адъюванта для некоторых рекомбинантных белков с короткими конформационными эпитопами RBD Spike-белка были получены сыворотки мышей, демонстрирующие вируснейтрализующий эффект в реакции микронейтрализации с живым вирусом SARS‑CoV‑2 (hCoV‑19/Russia/StPetersburg-3524/2020 EPI_ISL_415710 GISAID). Полученные результаты могут быть использованы для разработки эпитопных вакцин для профилактики COVID‑19 и других вирусных инфекций.
Текст статьи
Сноски
* Адресат для корреспонденции.
Финансирование
Исследование выполнено при поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (проект № 20‑04‑6037320). Получение белка Rop-RBM-Rop-Tri-HBD и исследование его способности вызывать образование вируснейтрализующих антител было проведено в рамках государственного задания Министерства здравоохранения Российской Федерации № 056‑00119‑21‑00 («Разработка препарата блокатора рецептора АСЕ2 для профилактики и терапии коронавирусной инфекции»).
Конфликт интересов
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Соблюдение этических норм
Все применимые международные, национальные и/или институциональные принципы ухода и использования животных были соблюдены.
Список литературы
1. Burton, D. R. (2002) Antibodies, viruses and vaccines, Nat. Rev. Immunol., 9, 706-713, doi: 10.1038/nri891.
2. Neu, K. E., Henry Dunand, C. J., and Wilson, P. C. (2016) Heads, stalks and everything else: how can antibodies eradicate influenza as a human disease? Curr. Opin. Immunol., 42, 48-55, doi: 10.1016/j.coi.2016.05.012.
3. Sok, D., and Burton, D. R. (2018) Recent progress in broadly neutralizing antibodies to HIV, Nat. Immunol., 19, 1179-1188, doi: 10.1038/s41590-018-0235-7.
4. Dejnirattisai, W., Supasa, P., Wongwiwat, W., Rouvinski, A., Barba-Spaeth, G., et al. (2016) Dengue virus sero-cross-reactivity drives antibody-dependent enhancement of infection with zika virus, Nat. Immunol., 17, 1102-1108, doi: 10.1038/ni.3515.
5. Lu, S., Xie, X. X., Zhao, L., Wang, B., Zhu, J., et al. (2021) The immunodominant and neutralization linear epitopes for SARS-CoV-2, Cell Rep., 34, 108666, doi: 10.1016/j.celrep.2020.108666.
6. Sekimukai, H., Iwata-Yoshikawa, N., Fukushi, S., Tani, H., Kataoka, M., et al. (2020) Gold nanoparticle-adjuvanted S protein induces a strong antigen-specific IgG response against severe acute respiratory syndrome-related coronavirus infection, but fails to induce protective antibodies and limit eosinophilic infiltration in lungs, Microbiol. Immunol., 64, 33-51, doi: 10.1111/1348-0421.12754.
7. Karyagina, A. S., Gromov, A. V., Grunina, A. M., Lyaschuk, A. M., Grishin, A. V., et al. (2021) Development of a platform for producing recombinant protein components of epitope vaccines for the prevention of COVID-19, Biochemistry (Moscow), 86, 1275-1287, doi: 10.1134/S0006297921100096.
8. Manenti, A., Maggetti, M., Casa, E., Martinuzzi, D., Torelli, A., et al. (2020) Evaluation of SARS-CoV-2 neutralizing antibodies using a CPE-based colorimetric live virus micro-neutralization assay in human serum samples, J. Med. Virol., 92, 2096-2104, doi: 10.1002/jmv.25986.
9. Barchuk, A., Shirokov, D., Sergeeva, M., Tursun Zade, R., Dudkina, O., et al. (2021) Evaluation of the performance of SARS-CoV-2 antibody assays for a longitudinal population-based study of COVID-19 spread in St. Petersburg, Russia, J. Med. Virol., 93, 5846-5852, doi: 10.1002/jmv.27126.
10. Lan, J., Ge, J., Yu, J., Shan, S., Zhou, H., et al. (2020) Structure of the SARS-CoV-2 spike receptor-binding domain bound to the ACE2 receptor, Nature, 581, 215-220, doi: 10.1038/s41586-020-2180-5.
11. Ju, B., Zhang, Q., Ge, J., Wang, R., Sun, J., et al. (2020) Human neutralizing antibodies elicited by SARS-CoV-2 infection, Nature, 584, 115-119, doi: 10.1038/s41586-020-2380-z.
12. Cao, Y., Su, B., Guo, X., Sun, W., Deng, Y., et al. (2020) Potent neutralizing antibodies against SARS-CoV-2 identified by high-throughput single-cell sequencing of convalescent patients’ B cells, Cell, 182, 73-84.e16, doi: 10.1016/j.cell.2020.05.025.
13. Brouwer, P., Caniels, T. G., van der Straten, K., Snitselaar, J. L., Aldon, Y., et al. (2020) Potent neutralizing antibodies from COVID-19 patients define multiple targets of vulnerability, Science, 369, 643-650, doi: 10.1126/science.abc5902.
14. Hansen, J., Baum, A., Pascal, K. E., Russo, V., Giordano, S., et al. (2020) Studies in humanized mice and convalescent humans yield a SARS-CoV-2 antibody cocktail, Science, 369, 1010-1014, doi: 10.1126/science.abd0827.
15. Jones, B. E., Brown-Augsburger, P. L., Corbett, K. S., Westendorf, K., Davies, J., et al. (2021) The neutralizing antibody, LY-CoV555, protects against SARS-CoV-2 infection in nonhuman primates, Sci. Transl. Med., 13, eabf1906, doi: 10.1126/scitranslmed.abf1906.
16. Chi, X., Yan, R., Zhang, J., Zhang, G., Zhang, Y., et al. (2020) A neutralizing human antibody binds to the N-terminal domain of the Spike protein of SARS-CoV-2, Science, 369, 650-655, doi: 10.1126/science.abc6952.
17. Suryadevara, N., Shrihari, S., Gilchuk, P., VanBlargan, L. A., Binshtein, E., et al. (2021) Neutralizing and protective human monoclonal antibodies recognizing the N-terminal domain of the SARS-CoV-2 spike protein, Cell, 184, 2316-2331.e15, doi: 10.1016/j.cell.2021.03.029.
18. McCallum, M., De Marco, A., Lempp, F. A., Tortorici, M. A., Pinto, D., et al. (2021) N-terminal domain antigenic mapping reveals a site of vulnerability for SARS-CoV-2, Cell, 184, 2332-2347.e16, doi: 10.1016/j.cell.2021.03.028.
19. Sarkar, I., Garg, R., and van Drunen Littel-van den Hurk, S. (2019) Selection of adjuvants for vaccines targeting specific pathogens, Expert Rev. Vaccines, 18, 505-521, doi: 10.1080/14760584.2019.1604231.
20. Iwata-Yoshikawa, N., Uda, A., Suzuki, T., Tsunetsugu-Yokota, Y., Sato, Y., et al. (2014) Effects of Toll-like receptor stimulation on eosinophilic infiltration in lungs of BALB/c mice immunized with UV-inactivated severe acute respiratory syndrome-related coronavirus vaccine, J. Virol., 88, 8597-8614, doi: 10.1128/JVI.00983-14.
21. He, X., Hong, W., Pan, X., Lu, G., and Wei, X. (2021) SARS-CoV-2 Omicron variant: Characteristics and prevention, MedComm, 2, 838-845, doi: 10.1002/mco2.110.